DIETA

ELABORACIÓN DE UNA DIETA EQUILIBRADA

OBJETIVO

• Elaborar una dieta para dos personas con distintas ncesidades nutricionales: un deportista de resistencia como un ciclista y una mujer de mediana edad , de 70 kilos de peso y con un etsilo de vida sedentario.

	SEDENTARIO	DEPORTISTA RECREATIVO	DEPORTISTA DE ALTO RENDIMIENTO
ENERGÍA(KCAL)	25-30 kcal/kg	30-40 kcal/kg	50-80 kcal/kg
HIDRATOS DE CARBONO	3,5-4 g/kg	4-6 g/kg	5-10 g/kg
GRASAS	---------------->	0,45-0,7 g/cada g de proteína	<--------------------
PROTEÍNAS	0,8 g/kg	0,8-1 g/kg	resistencia: 1,2-1,5g/kg fuerza: 1,5-2 g/kg

PROCEDIMIENTO

1. Primero calculamos el gasto calorico diario . Definimos el total energético necesario , numero de comida y su distribución calórica .
2. Calculamos las cantidades necesarias de macro y micro nutrientes
3. Elaboramos la dieta 

RESULTADOS DEPORTISTA

1.Gastos caloricos diarios 

•  3174 Calorías/día

TMB= (10 x 80) + (6,25 x 175) - (5 x 21) + 5= 800+1093.75-105+5= 1794 calorías

TMA= (5 x 110) + (3 x 150)+ (2 x 190) = 770 + 450 + 380= 1380 calorías

TMT= TMB + TMA= 3174 cal

 2.Cantidad necesaria de macro y micro nutrientes

Proteínas = (3174 x 15%) : 4= 119 g

Hidratos de carbono =  (3174 x 60%) : 4= 475 g

Gasa = (3174 x 25%) : 9= 88 g


MENU DEPORTISTA

TOTAL

calorías:3007cal

proteínas: 175g

grasas:118g

hidratos de carbono: 367g


RESULTADOS MUJER 

1.Gastos caloricos diarios 

• 2779 Calorías/día

TMB= (10 x 70) + (6,25 x 175) - (5 x 60) + 5= 700+1093.75-300+5= 1499calorías

TMA= (5 x 100) + (3 x 140) + (2 x 180) = 500 + 420 + 360= 1280 calorías

TMT= TMB + TMA= 2779 cal

 2.Cantidad necesaria de macro y micro nutrientes

Proteínas = (2779 x 15%) : 4= 104 g

Hidratos de carbono =  (2779 x 60%) : 4= 416 g

Gasa = (2779 x 25%) : 9= 77g

3.Tabla

TOTAL:
Calorias : 2554 cal
Proteínas : 90g
Hidratos de carbono : 370g
Grasas : 65 g

ESTUDIO DE EL CASO DE LA MARGARINA

LAS MARGARINAS: NO ES BUENO TODO LO QUE LO PARECE 
    
      1.En la etiqueta de margarina que se adjunta ¿ cual es el porcentaje de grasas saturadas?

•        Gasas saturadas : 86,5g
•        Porcentaje:86.6%

      2.¿Que porcentaje de ácidos grasos mono o poliinsaturados posee?

• Monoinsaturados : 5.8g -->5.8%
• Poliinsaturados: 1.8g --> 1.8%

       3.Busca información sobre si esta proporción de ácidos grasos saturados e instaurados es            saludable o por el contrario , puede resultar perjudicial.

•     Las grasas saturadas , Monoinsaturadas y poliinsaturadas en este caso son perjudiciales , debemos limitar las grasas saturadas a menos del 10% unos 40-60 g en nuestra dieta diaria.
• Obtener no más del 25 al 30% de las calorías diarias a partir de las grasas. Asegúrese de que la mayoría de esas grasas sean monoinsaturadas o poliinsaturadas.
• Reducir la grasa saturada a menos del 6% de sus calorías diarias.
• 
  

       4.¿Que son las grasas trans , cómo se producen y cuales son sus efectos para la salud?

• Las grasas trans son un tipo de grasas que se obtienen a través de la hidrogenación de un aceite liquido , para modificar su estado físico y su textura.
• La mayoría de las grasas trans que nosotros ingerimos se obtienen de alimentos procesados que son preparados con aceites vegetales , que son parcialmente hidorgenados , como por ejemplo las patatas fritas , las galletas , las magdalenas..
• Las grasas trans tienen varios efectos sobre la salud:

1. las grasas trans son nocivas , aumentan los triglicéridos y el coresterol LDL y reducía el HDL
2. Su consumo aumentaba la incidencia de enfermedades cardíacas e inflamatorias
3. También lo asocian con el riesgo de sufrir depresión 
4. Elevan la glucosa en sangre hasta un 20% 

Bibliográfica:

• https://medlineplus.gov/spanish/ency/patientinstructions/000747.htm
• https://medlineplus.gov/spanish/ency/patientinstructions/000838.htm 
• Hoja de clase ; Estudio de las margarinas, no es bueno todo lo que parece.

PRACTICA Nº3: Análisis bioquímico

ANÁLISIS BIOQUÍMICO DE LOS PRINCIPIOS INMEDIATOS DE LA LECHE.

Materiales:   

1.  Mechero
2. Pinzas
3. Pipeta
4. Tubos de ensayo
5. Pipeteador automatico
6. Reacción de feling A
7. Reacción de feling B
8. Reacción de biuret
9. Reacción de sudán III
10. Marcador de vidreo
11. Agua 
12. Leche

 

 Metodos:
1.Reacción de Feling

Agua

• Con una pipeta cogemos 5 ml de agua y lo echamos en un tubo de ensayo
• Añadimos en el tubo de enallo 2ml de Felling A y 2 ml de Felling B
• Lo agitamos cuidadosamente , si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.
• Por ultimo lo calentamos al fuego    

Leche

• Con una pipeta cogemos 5 ml de leche y lo echamos en un tubo de ensayo
• Añadimos en el tubo de enallo 2ml de Felling A y 2 ml de Felling B
• Lo agitamos cuidadosamente , si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.
• Por ultimo lo calentamos al fuego   

     2.Reacción de Biuret.

• Con una pipeta cogemos 5 ml de leche o agua y lo echamos en un tubo de ensayo
• Añadimos en el tubo de enallo 2ml de Felling A
• Lo agitamos cuidadosamente , si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.

   3. Con agua destilada

• Con una pipeta cogemos 5 ml de leche o leche y lo echamos en un tubo de ensayo
• Añadimos en el tubo de enallo 3 gotas de Sudán III  

Leche y agua

Resultados:
 Reacciones de Feling:

•  En la reaccion de leche podemos apreciar que al calentarlo vemos la activacion de la preparacion de feling , sin embargo en a peparacion que hemos echo con el agua no vemos la activacion de feling 

 

Izquierda (leche) Derecha (Agua)

Reacción de Biuret: 

• La reaccion de biuret con el agua da negativa, y la leche da positiva

 

Agua

 

Leche

 Reacción de sudán:  

• En esta reacción no la hemos podido ver ni con el agua ni con la leche.
  

Izquiera(leche) Derecha(Agua)

Conclusión:

• Depende de la reacción y de la mezcla podemos ver su activación o no , no siempre una reacción sale .

PRACTICA Nº5

OBSERVACIÓN DE CÉLULAS EN MITOSIS.

 MATERIALES

1. Cebolla
2. Microscopio
3. Vidrios de reloj 
4. Pinzas
5. Orceina A 
6. Orceina B 
7. Meristemo de la cebolla
8. Papel secante
9. Portas
10. Cubres
11. Mechero

Metodos:

• Cogemos el meristemo de la cebolla y lo colocamos en el vidreo de reloj
• Lo bañamos en Orceina A
• Calentamos 8 minutos al fuego
• Cogemos con una pinta el meristemo y le echamos un poco de agua
• Lo colocamos en el porta
• Le echamos 1 gota de Orceina B
• Espramos 1-2 minutos
• Lo labamos con agua
• Colocamos el cubre 
• Lo secamos con el papel secante para sacar el esceso de agua 
• Ya esta listo para ver las celulas en mitosis 

Resultados:

Orceina A

Orceina B

Microscopio

Conclusiones:
Tras varias veces intentando ver las celulas en mitosis utilizando tintura para teñir los cromosomas y abrir la membrana de la celula , no lo conseguimos ver, es un experimento que no siempre sale.

PRACTICA Nº4

HIDRÓLISIS DEL ALMIDÓN

Materiales: 

1. Reactivo de lugol
2. Retulador
3. Pipeta
4. Pipeteador
5. Felling A
6. Felling B
7. Solución de almidon
8.  Agua
9. Gradilla
10. Tubos de ensayo
11. Ácido clodríco

METODOS:

1. Echamos en el tubo de ensayo 5ml de almidón +3 gotas de lugol y le damos calor 2 min.
2. Echamos en el tubo de ensayo 5ml de agua + 3 gotas de lugol  y le damos calor 2 min
3. Echamos en el tubo de ensayo 5 mil de almidón + felling y calentamos
4. Echamos en el tubo de ensayo 5 ml de almidón + 5 gotas de HCL (esperar 10 minutos para que actue)+ Reacción de felling( 2ml de Fa y 2ml de Fb)  y calentamos
5.  Masticamos el pan y cada 3 , 6 y 9 minutos echamos un poco en el tubo de ensayo y echamos 2ml de Felling A y 2 ml de Felling B , y por ultimo calentamos.

RESULTADOS: (Blanco = positivo)

1. Primero sale un color morado y despues de calentarlo sale blanco amarillento
2.  Pirmero sale blanco y al calentarlo un blanco amarillento 
3. Despues de todos los procedimientos sale azuñ deñ color del felling A , actuan las cadenas y en el proceso se libera glucosa 
4. Este tubo de ensayo en teoria tendria que haber alido rojo teja , pero nosotras lo hemos preparado al , echamos el almidon en la boca en sta preparación 
5. A los 3 min de estar masticando y hacer la preparación , sale de color rojo . A los 6 minutos sale un rojo mas oscuro. A los 9 minutos no nos salio , ya que el erros que cometimos anteriormente tenia que ver con este , echamos este pan masticado en la disolución de almidón + felling.

 
CONCLUSIÓN:

• El lugol detecta el almidón y se intredice por dentro del almidón y al calentar la mezcla sale el almidón.

PRACTICA Nº2

OBSERVACIÓN DE LOS PROCESOS OSMÓTICOS 

MATERIALES

1. Cuentagotas
2. Microscopio
3. Vaso de precipitados
4. Agua saturada de sal 
5. Agua destilada
6. Agua del grifo
7.  Cebolla
8. Pinzas
9. Papel secante
10. Cubre
11. Porta

1.AGUA SATURADA CON SAL

• Cogemos un trozo de epidermis de la cebolla
• La colocamos en el porta 
• Le echamos agua salada 
• Le colocamos encima el cubre , se presiona con el papel secante
•  Listo para observar al microscopio

Aumento pequeño

Aumento grande

Aumento mediano

 
 2.AGUA DESTILADA

• Cogemos un trozo de epidermis de la cebolla
• La colocamos en el porta 
• Le echamos agua destilada
• Le colocamos encima el cubre , se presiona con el papel secante
•  Listo para observar al microscopio

Aumento mediano

Aumento grande

Aumento pequeño

 3.AGUA DEL GRIFO

• Cogemos un trozo de epidermis de la cebolla
• La colocamos en el porta 
• Le echamos agua del grifo
• Le colocamos encima el cubre , se presiona con el papel secante
•  Listo para observar al microscopio

Aumento mediano

Aumento pequeño

Aumento grande

Conclusiones:

• En la observacion de cebolla con el agua del grifo podemos ver la diferencia entre la pared celular y la membrana celular
• En la observacion de cebolla con el agua con sal podemos observar como se deshidrata la célula al intentarse equilibrar con la sustancia externa
• En la obervacion de cebolla con el agua destilada podemos observar que el medio externo hipotónico se junta con la pared clular y la membrana
• Como hemos podido ver las celulas siempre se intentan equlibrar mediante los procesos osmóticos.
  

PRACTICA Nº1

OBSERVACIÓN DE LOS DISTINTOS TIPOS DE CÉLULAS

MATERIALES

1. Portas
2. Cubres
3. Alcohol metílico
4. Mechero
5. Azul de metileno
6. Pinzas 
7. Agua
8. Microscopio
9. Agujas emangadas
10. Cebolla
11. Células de la boca 
12. Epidermis de la cebolla
13. Bacterias lacticas
14. Yogur
15. Palillos
16. Papel secante 

MÉTODOS (técnicas de tinción)

CÉLULAS DE LA BOCA

1. Buscar diagrama de un microscopio óptico
   
2. Cogemos un palillo , lo introducimos en la boca y sacamos las celulas              
3. Las colocamos en el porta                                                                                       
4. Le echamos una gotita de agua 
5. Lo calentamos hasta que todo de evapore
6. Echamos el tinte (esperamos 5 minutos)
7. Limpiamos con agua
8. Ponemos el cubre y preparación lista.

CÉLULAS DEL YOGUR

1. Introducimos el palillo en el yogur
2. Las colocamos en el porta 
3. Le echamos una gotita de agua 
4. Lo calentamos hasta que todo de evapore
5. Echamos el tinte (esperamos 5 minutos)
6. Limpiamos con agua
7. Ponemos el cubre y preparación lista.

CÉLULAS DE LA CEBOLLA

1. Obtenemos un cacho pequeño de epidermis de cebolla
2. Lo colocamos en el porta 
3. Echamos el tinte (esperamos 5 minutos)  
4. Agarramos con las pinzas
5. Limpiamos con agua
6. Ponemos el cubre y preparación lista.

RESULTADOS

CELULAS DE LA BOCA

AUMENTO MEDIANO

AUMENTO PEQUEÑO

AUMENTO GRANDE

                                                   

CÉLULAS DEL YOGUR

AUMENTO GRANDE

AUMENTO MEDIANO

AUMENTO PEQUEÑO

CÉLULAS DE LA CEBOLLA

AUMENTO GRANDE

AUMENTO MEDIANO

AUMENTO PEQUEÑO

CONCLUSIONES

• Como podemos observar las celulas animales , vegetales y las bacterias son de diferentes tamaños.